- Код статьи
- S3034519725060196-1
- DOI
- 10.7868/S3034519725060196
- Тип публикации
- Статья
- Статус публикации
- Опубликовано
- Авторы
- Том/ Выпуск
- Том / Номер выпуска 6
- Страницы
- 99-104
- Аннотация
- Пациента северного домашнего оленя была исследована с анатомической точки зрения. Данные свидетельствуют о пяти, в большинстве случаев семи, хорошо развитых котинедонов и картуксулов, которые обнаружены в обоих рядах матки, поэтому пациенту северного домашнего оленя следует классифицировать как олицетворческую. Фрагменты пациенты (толщина – от 5 мм, площадь – до 3 см²), полученные от северных домашних оленей (Rangifer taranatis) фиксировали в 10% за одну фермерную формацию HistoSafe, затем обезвоживали в растворе Изопрег с последовательным увеличением концентрации и заливали в парафин Гистомикс. Расчеты проводили в программах IBM SPSS Statistics 26 и Microsoft Excel. Впервые у важных северного домашнего оленя установлена способность мезенхиальных стромальных клеток проявлять пластичность, характерную для мезенхиально-эпителиального перехода. На последних сроках эстанци было частичное разрушение эпителиа аминона с образованием вакуолей. Эпителий ворсин хориона кубический, с умеренной внутриклеточной вакуолизацией, поэтому клетки приобретают перстневидную и просветленную морфологию. Процессы, происходящие в клетках фибробластического ряда картинулов, указывают на вакуольную дистрофию клеток эпителиа ворсин хориоалантонса. Выявили полиморфную инфильтрацию соединительной ткани ворсин и стромы картинулов в плацетпомах и выраженную ангеремию капилляров ворсин, вакуолизацию и просветление клеток эпителиа ворсин хориоалантонса. Таким образом, наблюдаемые нами особенности строения плацетпы северного домашнего оленя — результат адаптации жевательных млекопитающих к вынашиванию и рождению депельшей в экстремальных условиях климата территории Республики (Сахар Якутия).
- Ключевые слова
- северный домашний олень структура плацетпы гистология морфометрия репродукция
- Дата публикации
- 01.06.2025
- Год выхода
- 2025
- Всего подписок
- 0
- Всего просмотров
- 19
Библиография
- 1. Авдеенко В.С., Горбаков М.Е., Мороз А.И. Распределение металлопротеиназ межклеточного матрикса ворсин аллонтохориона котиледонов и крипт карункулов коров с плацентарной недостаточностью // Труды Карельского научного центра Российской академии наук. 2024. № 7. С. 37–46. https://doi.org/10.17076/eb1970 @@ Avdeenko V.S., Gorbakov M.E., Moroz A.I. Raspredelenie metalloproteinaz mezhkletochnogo matriksa vorsin allontohoriona kotiledonov i kript karunkulov korov s placentarnoj nedostatochnost'yu // Trudy Karel'skogo nauchnogo centra Rossijskoj akademii nauk. 2024. № 7. S. 37–46. https://doi.org/10.17076/eb1970
- 2. Авдеенко В.С. Мороз А.И., Сафронов Д.И. и др. Патоморфологические изменения и иммунолокализация матриксных металлопротеиназ в плаценте коров при задержании последа // Вестник российской сельскохозяйственной науки. 2024. № 5. С. 94–101. https://doi.org/10.31857/S2500208224050195 @@ Avdeenko V.S. Moroz A.I., Safronov D.I. i dr. Patomorfologicheskie izmeneniya i immunolokalizaciya matriksnyh metalloproteinaz v placente korov pri zaderzhanii posleda // Vestnik rossijskoj sel'skohozyajstvennoj nauki. 2024. № 5. S. 94–101. https://doi.org/10.31857/S2500208224050195
- 3. Крутикова А.А., Беликова А.О., Пегливанян Г.К. и др. Особенности гормонального фона самок северного оленя (Rangifer tarandus) на разных стадиях полового цикла // Международный вестник ветеринарии. 2024. № 4. С. 467–473. https://doi.org/10.52419/issn2072-2419.2024.4.467 @@ Krutikova A.A., Belikova A.O., Peglivanyan G.K. i dr. Osobennosti gormonal'nogo fona samok severnogo olenya (Rangifer tarandus) na raznyh stadiyah polovogo cikla // Mezhdunarodnyj vestnik veterinarii. 2024. № 4. S. 467–473. https://doi.org/10.52419/issn2072-2419.2024.4.467
- 4. Федоров В.И., Слепцов Е.С., Племяшов К.В. Особенности течения послеродового периода у важенок северных домашних оленей, ее морфофизиология и поведенческие реакции на Северо-Востоке России (Республика Саха) // Генетика и разведение животных. 2020. № 3. С. 99–105. https://doi.org/10.31043/2410-2733-2020-3-99-105 @@ Fedorov V.I., Slepcov E.S., Plemyashov K.V. Osobennosti techeniya poslerodovogo perioda u vazhenok severnyh domashnih olenej, ee morfofiziologiya i povedencheskie reakcii na Severo-Vostoke Rossii (Respublika Saha) // Genetika i razvedenie zhivotnyh. 2020. № 3. S. 99–105. https://doi.org/10.31043/2410-2733-2020-3-99-105
- 5. Acuña F. et al. Differential Remodelling of Endometrial Extracellular Matrix in the Non-Pregnant Uterus of Lagostomus maximus as a Potential Mechanism Underlying Embryonic Death // Animals. 2025. Vol. 15. № 4. P. 542. https://doi.org/10.3390/ani15040542
- 6. Chen L., Qiu Q., Jiang Y. et al. Large-scale ruminant genome sequencing provides insights into their evolution and distinct traits. 2019. Science 364: eaav6202. https://doi.org/10.1126/science. aav6202
- 7. Fedorov V.I., Sleptsov E.S., Vinokurov N.V. et al. Birth and afterbirth period in mares of the Yakut breed // Reproduction in Domestic Animals. 2019. Vol. 54. № S3. P. 87–88. https://doi.org/10.1111/rda.13528
- 8. Flamini M.A., Barbeito C.G., Portiansky E.L. Morphological characteristics of the uterus and uterine cervix of the plains viscacha (Lagostomus maximus). Acta Zool. 2019. № 101. P. 353–365. https://doi.org/10.1111/azo.12300
- 9. Foster A., Heawood K., Ruder M., Ecroyd S. Reindeer // Deer Veterinary Medicine. 2025. P. 385–394. https://doi.org/10.1002/9781394221370.ch31
- 10. Holst B.S., Engelman A., Gröndahl G. et al. Companion animal and equine clinical research: a Nordic perspective // Acta veterinaria Scandinavica. 2023. Vol. 67. № 1. P. 3. https://doi.org/10.1186/s13028-024-00787-1
- 11. Kim Y.K., Koyabu D., Lee H., Kimura J. Cranial morphological homogeneity in two subspecies of water deer in China and Korea // J. Vet. Med. 2015. Sci. 77. Р. 1427–1435. https://doi.org/ 10.1292/jvms.15-0037
- 12. Lee J.H., Oh M.G., Kim S.H. Cell Reconstitution of Caruncle Placenta through the 20α-HSD/Casp-3 Apoptotic Pathway during Early Pregnancy in Bovines. 2022. № 12(1). Р. 162. PMID: 36611954. https://doi.org/ 10.3390/cells12010162
- 13. Nagy S., Lindeberg H., Nikitkina E. et al. Reproduction of male reindeer (Rangifer tarandus) // Animal reproduction science. 2021. № 227. P. 106722. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2021.106722
- 14. Oleński K., Kamiński S., Tokarska M., Hering D.M. Subset of SNPs forparental identification in European Bison Lowland-Biał owieża line (Bison bonasus bonasus). Conservation Genetics Resources. 2018. № 10. P. 1–6. https://doi.org/10.1007/s12686-017-0768-3
- 15. Qumsiyeh M., Handal E.N. Adaptive nature of chromosome variation in placental mammals and applicability to domestication and invasiveness // Hystrix. 2022. Vol. 33. № 2. P. 102. https://doi.org/10.4404/hystrix-00509-2021
- 16. Sohn J.H., Yamane S., Saitoh Y. et al. Morphology of placentome in Korean water deer Hydropotes inermis argropus // J Vet Med Sci. 2021. № 83(7). Р. 1081–1085. https://doi.org/ 10.1292/jvms.21-0158
- 17. Wilsher S., Greenwood R.E.S., Mahon G.D., Allen W.R. Placentation and hormonal maintenance of pregnancy in the impala (Aepyceros melampus) // Placenta 2020. № 95. P. 91–105. https://doi.org/10.1016/j.placenta.2020.04.009
- 18. Wilsher S., Stansfield F., Allen W.R. Placentation in the blue wildebeest (Connochaetes taurinus) // Placenta. 2019. № 82. P. 46–56. https://doi.org/10.1016/j.placenta.2019.05.008
- 19. Wilsterman K., Moore E.C., Schweizer R.M. et al. Adaptive structural and functional evolution of the placenta protects fetal growth in high-elevation deer mice // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2023. Vol. 120. № 25. P. e2218049120. https://doi.org/10.1073/pnas.2218049120
