Везде

RAS Agricultural ScienceВестник российской сельскохозяйственной науки Vestnik of the Russian Agricultural Science

  • ISSN (Print) 2500-2082
  • ISSN (Online) 3034-5200

Use of zoohumus extracts in soybean cultivation under regulated agroecosystem conditions

You can
PII
10.31857/S2500208224050048-1
DOI
10.31857/S2500208224050048
Publication type
Article
Status
Published
Authors
Ya.V. Puhalsky
  • Occupation: PhD in Biological Sciences, Leading Researcher
  • Affiliation: All-Russia Research Institute for Agricultural Microbiology
Volume/ Edition
Volume / Issue number 5
Pages
16-21
Abstract
A model experiment was conducted in the laboratory conditions of the climate chamber to study the effect of liquid extract of black soldier fly zoohumus prepared in different ways on the growth rates and germination of seeds of the early ripening soybean variety EN Argenta. The zoohumus suspension was used in all variants at a dose of 0.2% (2000 ppm). As an additional background, a complex fertilizer containing the necessary plant nutrients in the form of various mineral salts was added. Analysis of the experimental data showed that the highest percentage of plant germination was recorded in the variant with the introduced aqueous suspension of zoohumus without centrifugation and without sterilization, and amounted to 94%. Against the background of pure organic matter, an increase in shoot biomass by an average of 22% was recorded. However, here the variant with sterilization, but without centrifugation of the zoohumus suspension, stood out. Against the background of the organomineral environment, the weight and height of the plants were higher, but stagnation in growth was noted, probably due to oversaturation in the feeding regime and the formation of chelate complexes of prolonged absorption. Thus, an aqueous suspension of zoohumus obtained by sterilization without additional centrifugation is the best way to prepare samples of raw materials for further use in sterile experiments. Centrifugation reduces the amount of enzymes and nutritional compounds, which negatively affects the quality of the suspension, and additional sterilization releases an additional amount of low-molecular compounds into the environment, which can feed microorganisms.
Keywords
cоя зоогумус фитотрон агрегатопоника морфометрические показатели роста
Date of publication
17.09.2025
Year of publication
2025
Number of purchasers
0
Views
3

References

  1. 1. Безуглова О.С., Полиенко Е.А., Горовцов А.В. Гуминовые препараты как стимуляторы роста растений и микроорганизмов (обзор) // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2016. № 4 (60). С. 11–14.
  2. 2. Демиденко Г.А. Влияние экологических факторов на формирование посевных качеств сои в Красноярской лесостепи // Вестник КрасГАУ. 2015. № 3 (102). С. 64–68.
  3. 3. Драгавцев В.А. Новая система регуляции у растений и необходимость создания селекционного фитотрона в РФ // Журнал технической физики. 2018. Т. 88. № 9. С. 1331–1335. https://doi.org/10.21883/JTF.2018.09.46416.26-18
  4. 4. Зайцев Н.И., Бочкаре́в Н.И, Зеленцов С.В. Перспективы и направления селекции сои в России в условиях реализации национальной стратегии импортозамещения // Масличные культуры. 2016. № 2 (166). С. 3–11.
  5. 5. Латушкин В.В., Зеленков В.Н., Лапин А.А. и др. Экспериментальное моделирование условий онтогенеза растений и биотехнологических методов их выращивания в закрытой экосистеме – синерготроне // Вестник РАЕН. 2021. № 21 (1). С. 46–53. https://doi.org/10.52531/1682-1696-2021-21-1-46-53
  6. 6. Наими О.И., Безуглова О.С., Полиенко Е.А. и др. Фосфатный режим и активность фосфатазы в черноземе обыкновенном при возделывании нута // Агрохимический вестник. 2020. № 3. С. 25–29. https://doi.org/10.24411/1029-2551-2020-10034
  7. 7. Наумченко Е.Т., Ковшик И.Г. Влияние погодных условий и минерального питания на продуктивность сои // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. 2014. № 12. С. 20–25.
  8. 8. Нетёсов С.В., Щинников И.А. Перспективы применения фитотронов для выращивания меристемных растений // АгроЭкоИнфо. 2023. № 2 (56). С. 1–8. https://doi.org/10.51419/202132241
  9. 9. Пендюрин Е.А., Рыбина С.Ю., Смоленская Л.М. Использование зоокомпоста черной львинки в качестве органического удобрения // Аграрная наука. 2020. № 7-8. C. 106–110. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2020-340-7-106-110
  10. 10. Поверин Д.И. Синерготрон – автоматизированное устройство, предназначенное для проведения комплексных экспериментальных исследований в сфере сельскохозяйственного растениеводства // Товаровед продовольственных товаров. 2017. № 2. С. 52–60.
  11. 11. Синеговская В.Т., Синеговский М.О. Выращивание растений сои методом гидропоники // Аграрная наука Евро-Северо-Востока. 2023. 24 (2). С. 194–200. https://doi.org/10.30766/2072-9081.2023.24.2.194-200
  12. 12. Сихарулидзе Т.Д., Храмой В.К. Структура урожая и урожайность сои в зависимости от уровней минерального питания в условиях центрального Нечерноземья // Плодородие. 2012. № 3 (66). С. 9–10.
  13. 13. Стекольников К.Е., Комова А.В. Фосфатазная активность чернозёма выщелоченного и режим фосфатов в стационарном опыте // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2017. № 3 (65). С. 183–188.
  14. 14. Трепуз С.В., Долгих П.П., Барсуков В.А. Система автоматизированного управления фитотроном со светокультурой и гидропонной технологией // Современные наукоемкие технологии. 2022. № 2. С. 143–149. https://doi.org/10.17513/snt.39049
  15. 15. Ширяева Н.А., Береговая Ю.В., Петрова С.Н. Эффективность применения комплексных минеральных удобрений в агроценозе сои // Вестник аграрной науки. 2020. № 5 (86). С. 66–72.
  16. 16. Cozzolino V., Monda H., Savy D. et al. Cooperation among phosphate-solubilizing bacteria, humic acids and arbuscular mycorrhizal fungi induces soil microbiome shifts and enhances plant nutrient uptake // Chemical and Biological Technologies in Agriculture. 2021. 8. 31. https://doi.org/10.1186/s40538-021-00230-x
  17. 17. El Gendy A.G., Taghred A.H., El-Sayed S.M. Effect of biofertilizers and/orurea on growth yield, essential oil and chemical compositions of Cymbopogon citratus plants // Journal of Applied Sciences Research. 2013. Vol. 9. P. 309–320.
  18. 18. Jindo K., Olivares F.L., Malcher D.J.P. et al. From Lab to Field: Role of Humic Substances Under Open-Field and Greenhouse Conditions as Biostimulant and Biocontrol Agent / Frontiers in Plant Science. 2020. № 11. 426. https://doi.org/10.3389/fpls.2020.00426
  19. 19. Muter O., Limane B., Strikauska S., Klavins M. Effect of humic-rich peat extract on plant growth and microbial activity in contaminated soil // Material Science and Applied Chemistry. 2015. 32. P. 68–74. https://doi.org/10.1515/msac-2015-001
  20. 20. Yadav M., Dhyani S., Joshi P. et al. Formic acid, an organic acid food preservative, induces viable-but-non-culturable state, and triggers new Antimicrobial Resistance traits in Acinetobacter baumannii and Klebsiella pneumoniae // Frontiers in Microbiology. 2022. 13. 966207. https://doi.org/10.3389/fmicb.2022.966207
QR
Translate

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Higher Attestation Commission

At the Ministry of Education and Science of the Russian Federation

Scopus

Scientific Electronic Library